КАЛЛУСОГЕНЕЗ И РЕГЕНЕРАЦИЯ РАСТЕНИЙ DESCHAMPSIA ANTARCTICA DESV. (POACEAE) В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

Разработаны условия индукции каллусообразования с корневых и стеблевых эксплантов и длительного выращивания культуры тканей Deschampsia antarctica Desv. Способность к каллусогенезу зависела от минерального состава питательной среды, комбинации концентраций регуляторов роста, места произрастания раст...

Full description

Bibliographic Details
Main Authors: Загричук, О., Герц, А., Дробык, Н., Кунах, В.
Format: Text
Language:unknown
Published: Институт биохимии им. А.В. Палладина Национальной академии наук Украины 2013
Subjects:
Online Access:http://cyberleninka.ru/article/n/kallusogenez-i-regeneratsiya-rasteniy-deschampsia-antarctica-desv-poaceae-v-kulture-in-vitro
http://cyberleninka.ru/article_covers/14506221.png
Description
Summary:Разработаны условия индукции каллусообразования с корневых и стеблевых эксплантов и длительного выращивания культуры тканей Deschampsia antarctica Desv. Способность к каллусогенезу зависела от минерального состава питательной среды, комбинации концентраций регуляторов роста, места произрастания растения-донора и типа экспланта. Оптимальной для получения каллусной ткани была питательная среда Гамборга, Эвелейга — B 5, дополненная 0,9–1 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и 0,09–0,1 мг/л цитокинина 6-бензиламинопурина. Каллусогенная активность с корневых эксплантов значительно (в 1,5–2 раза) превышала активность со стеблевых. Получены побеги путем спонтанного непрямого органогенеза. Выявлено влияние состава питательной среды и происхождения каллуса на эффективность регенерации. Укоренены регенерированные побеги и подобраны условия для роста растенийрегенерантов in vitro. Conditions for induction of callus formation from root and stem explants and long-term maintenance of Deschampsia antarctica Desv. tissue culture have been specified. Ability to callus formation depended on mineral composition of nutrient medium, combination of growth regulator concentrations, place of donor-plant vegetation and type of explant. The optimal for callus tissue generation was Gamborg, Eveleigh — B 5 nut rient medium, supplemented with 0.9–1.0 mg/l 2.4-dichlorophenyl acetic acid and 0.09–0.1 mg/l of cytokinine benzylaminopurine. Callus formation potency from the root explants considerably exceeded (1.5–2 times) that of from stem ones. The shoots were derived through spontaneous indirect organogenesis. Regeneration efficiency was found to be affected by nutrient medium composition and callus origin. Regenerated shoots were rooted and conditions for growth of regenerated plants in vitro were specified.